 Чимидова Н.В., Моисейкина Л.Г., Болаев Б.К., Убушиева А.В.
https://doi.org/10.31208/2618-7353-2022-18-26-36
АННОТАЦИЯ / ABSTRACT
Цель
Изучение генетического полиморфизма эритроцитарных антигенов у крупного рогатого скота калмыцкой, казахской белоголовой, герефордской и симментальской пород, оценка их генетической структуры, а также сравнительный анализ групп крови калмыцкого скота в Республике Калмыкия и Астраханской области.
Материалы и методы
Проведена сравнительная характеристика генетической структуры по группам крови калмыцкого скота Республики Калмыкия с крупным рогатым скотом казахской белоголовой, герефордской, симментальской и калмыцкой породами Астраханской области. Тестирование по группам крови проводилось по стандартным методикам (Neimann-Sorensen) с использованием моноспецифических сывороток (Nei M. and Li W.H., 1979) производства ОАО «Самарское» по племенной работе.
Результаты
Иммуногенетическое тестирование животных проводилось по стандартным методикам (Neimann-Sorensen) с использованием реагентов – моноспецифических сывороток, производимых в ОАО «Самарское» по племенной работе. Анализ иммуногенетического тестирования скота калмыцкой породы в Республике Калмыкия установил наибольшую частоту встречаемости антигенов В2 (69%), E'3 (82%), С1 (88%), W (67%), Z (71%) и наименьшую частоту встречаемости – B' (15%), Q (10%), C2 (17%), F (19%). Тестирование по группам крови казахской белоголовой породы показало, что антигены А1, I', C1, W, L, F имели высокой показатель частоты и составляли 63; 79; 73; 66; 91; 87% соответственно. Низкий показатель частоты у антигенов B2 (20%), G3 (11%), Y2 (2%), F' (11%), C2 (5%), X2 (5%), U” (12%). Такие антигены, как О2 и Н'', не встречались вообще. Наибольшая частота встречаемости эритроцитарных антигенов герефордской породы была у антигенов G2 (69%), O3 (65%), O4 (58%), Y2 (67%), Q (61%), C2 (72%), X2 (59%), L (71%), V (68%), наименьшая – у B2 (15%), I1 (14%), I' (17%), R2 (13%). Наибольшая частота встречаемости симментальской породы наблюдалась у антигена A2 – 66%, Y2 – 77%, C1 – 91%, F – 90%, H” – 65%. Наименьшая частота наблюдалась у антигенов B2 – 5%, I1 – 12%, F' – 11%. Антигены A'2, I', W и U” не встречались вообще. Тестирование по группам крови крупного рогатого скота калмыцкой породы Астраханской области показало, что максимальную частоту встречаемости имели антигены A2 – 100%, I1 – 70%, A'2 – 90%, O4 – 70%, E'3 – 92%, F' – 70%, R2 – 94%, L – 90%, F – 71% и Z – 100%. Антигены с минимальной частотой – O2 (1%), I' (2%), C2 (11%), S1 (1%). Такие антигены, как O3 и Q, не наблюдались вообще.
Заключение
Установлено, что скот калмыцкой породы, разводимый в Калмыкии, отличается от животных, разводимых в другой зоне, обеспечивая дальнейшее совершенствование породы. Генетический статус племенного поголовья калмыцкого скота Республики Калмыкия и казахской белоголовой, герефордской, симментальской и калмыцкой Астраханской области свидетельствует о генетическом разнообразии, о разнонаправленной селекционно-племенной работе в стадах.
Aim
The study of the genetic polymorphism of erythrocyte antigens in Kalmyk, Kazakh white-headed, Hereford and Simmental cattle, to evaluate their genetic structure, and to compare the blood groups of Kalmyk cattle in the Republic of Kalmykia and the Astrakhan region.
Materials and Methods
A comparative characterization of the genetic structure by blood groups of Kalmyk cattle of the Republic of Kalmykia with cattle of the Kazakh Whitehead, Hereford, Simmental and Kalmyk breeds of the Astrakhan region was carried out. Blood group testing was conducted according to standard methods (Neimann-Sorensen) using monospecific serum (Nei M. and Li W.H., 1979) produced by JSC "Samarskoye" for breeding work.
Results
Immunogenetic testing of animals was performed according to standard methods (Neimann-Sorensen) using reagents – monospecific serum produced by JSC "Samarskoye" for breeding work. Analysis of immunogenetic testing of Kalmyk cattle in the Republic of Kalmykia established the highest frequency of B2 (69%), E'3 (82%), C1 (88%), W (67%), Z (71%) antigens and the lowest frequency of B' (15%), Q (10%), C2 (17%), F (19%). Blood group testing of Kazakh white-headed breed showed that A1, I', C1, W, L, F antigens had a high frequency index and were 63; 79; 73; 66; 91; 87%, respectively. The antigens B2 (20%), G3 (11%), Y2 (2%), F' (11%), C2 (5%), X2 (5%), U' (12%) had a low frequency rate. Antigens such as O2 and H'' were not found at all. The highest frequency of occurrence of the Hereford antigens was in G2 (69%), O3 (65%), O4 (58%), Y2 (67%), Q (61%), C2 (72%), X2 (59%), L (71%), V (68%), the lowest in B2 (15%), I1 (14%), I' (17%), R2 (13%). The highest frequency of the Simmental breed was observed for the A2 antigen at 66%, Y2 at 77%, C1 at 91%, F at 90%, and H' at 65%. The lowest frequency was observed for the B2 antigen – 5%, I1 – 12%, F' – 11%. Antigens A'2, I', W and U' did not occur at all. Blood group testing of Kalmyk breeds of Astrakhan cattle showed the highest frequency of antigens A2 – 100%, I1 – 70%, A'2 – 90%, O4 – 70%, E'3 – 92%, F' – 70%, R2 – 94%, L – 90%, F – 71% and Z – 100%. Antigens with minimal frequency are O2 (1%), I' (2%), C2 (11%), S1 (1%). Antigens such as O3 and Q were not observed at all.
Conclusion
It has been established that the cattle of the Kalmyk breed bred in Kalmykia differs from the animals bred in another zone, providing further improvement of the breed. The genetic status of the breeding stock of the Kalmyk cattle of the Republic of Kalmykia and the Kazakh white-headed, Hereford, Simmental and Kalmyk of the Astrakhan region indicates genetic diversity, multidirectional selection and breeding work in the herds.
АВТОРЫ / AUTHORS
Н. В. Чимидова
Калмыцкий государственный университет им. Б.Б. Городовикова 358011, Россия, Республика Калмыкия, г. Элиста, 5 микрорайон, комплекс КГУ, строение 3, учебный корпус № 4
Чимидова Надежда Васильевна, кандидат биологических наук, старший преподаватель кафедры биотехнологии и животноводства, аграрный факультет
E-mail: nadezhdatchimidova@yandex.ru; тел.: 89374620111
Л. Г. Моисейкина
Калмыцкий государственный университет им. Б.Б. Городовикова 358011, Россия, Республика Калмыкия, г. Элиста, 5 микрорайон, комплекс КГУ, строение 3, учебный корпус № 4
Моисейкина Людмила Гучаевна, профессор кафедры биотехнологии и животноводства
Е-mail: turdumarovbm@mail.ru
Б. К. Болаев
Калмыцкий государственный университет им. Б.Б. Городовикова 358011, Россия, Республика Калмыкия, г. Элиста, 5 микрорайон, комплекс КГУ, строение 3, учебный корпус № 4
Болаев Баатр Канурович, профессор кафедры биотехнологии и животноводства
E-mail: kanur64@mail.ru
А. В. Убушиева
Калмыцкий государственный университет имени Б.Б. Городовикова 358011, Россия, Республика Калмыкия, Элиста, 5 микрорайон, комплекс КГУ, строение 3, учебный корпус № 4
Убушиева Алтана Вадимовна, специалист лаборатории молекулярных исследований Регионального научно-производственного центра по воспроизводству сельскохозяйственных животных
E-mail: ameli-altanas@mail.ru
About the Authors
N. V. Chimidova
Kalmyk State University named after B.B. Gorodovikov Educational building no. 4, building 3, KSU complex, microdistrict 5, Elista, Republic of Kalmykia, 358011, Russian Federation
Nadezhda V. Chimidova, Candidate of Biological Sciences, Senior Lecturer, Department of Biotechnology and Animal Husbandry, Faculty of Agriculture
E-mail: nadezhdatchimidova@yandex.ru; tel.: +79374620111
L. G. Moiseikina
Kalmyk State University named after B.B. Gorodovikov Educational building no. 4, building 3, KSU complex, microdistrict 5, Elista,Republic of Kalmykia, 358011, Russian Federation
Lyudmila G. Moiseikina, Professor, Department of Biotechnology and Animal Husbandry
E-mail: turdumarovbm@mail.ru
B. K. Bolaev
Kalmyk State University named after B.B. Gorodovikov Educational building no. 4, building 3, KSU complex, microdistrict 5, Elista,Republic of Kalmykia, 358011, Russian Federation
Baatr K. Bolaev, Professor, Department of Biotechnology and Animal Husbandry
E-mail: kanur64@mail.ru
A. V. Ubushieva
Kalmyk State University named after B.B. Gorodovikov Educational building no. 4, building 3, KSU complex, microdistrict 5, Elista, Republic of Kalmykia, 358011, Russian Federation
Altana V. Ubushieva, Specialist of the Laboratory of Molecular Research of the Regional Research and Production Center for the Reproduction of Farm Animals
E-mail: ameli-altanas@mail.ru
СПИСОК ИСТОЧНИКОВ / REFERENCES
1. Goddard M., Hayes B. Mapping genes for complex traits in domestic animals and their use in breeding programmes // Nature Reviews Genetics. 2009. Vol. 10. P. 381-391. https://doi.org/10.1038/nrg2575.
2. Pant S.D., Schenkel F.S., Verschoor C.P., You Q., Kelton D.F., Moore S.S., Karrow N.A. A principal component regression based genome wide analysis approach reveals the presence of a novel QTL on BTA7 for MAP resistance in Holstein cattle // Genomics. 2010. Vol. 95, no. 3. P. 176-182. https://doi.org/10.1016/j.ygeno.2010.01.001.
3. Wu Y., Fan H., Wang Y., Zhang L., Gao X., Chen Y., Li J., Ren H., Gao H. Ge-nome-wide association studies using haplotypes and individual SNPs in Simmental cattle // PLoS One. 2014. Vol. 9(10). Article number: e109330. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0109330.
4. Nelsen T.C., Short R.E., Urick J.J., Reynolds W.L. Heritabilities and genetic correlations of growth and reproductive measurements in Hereford bulls // Journal of Animal Science. 1986. Vol. 63, no. 2. P. 409-417. https://doi.org/10.2527/jas1986.632409x.
5. Abdelmanova A.S., Kharzinova V.R., Volkova V.V., Dotsev A.V., Sermyagin A.A., Chinarov R.Y., Zinovieva N.A., Boronetskaya O.I., Lutshikhina E.M., Sölkner J., Brem G. Comparative study of the genetic diversity of local steppe cattle breeds from Russia, Kazakhstan and Kyrgyzstan by microsatellite analysis of museum and modern samples // Diversity. 2021. Vol. 13, no. 8. P. 351. https://doi.org/10.3390/d13080351.
6. Зиновьева Н.А., Сермягин А.А., Доцев А.В., Боронецкая О.И., Петрикеева Л.В., Абдельманова А.С., Brem G. Генетические ресурсы животных: развитие исследований аллелофонда российских пород крупного рогатого скота – миниобзор // Сельскохозяйственная биология. 2019. Т. 54, № 4. Р. 631-641. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2019.4.631rus.
7. Сермягин А.А., Быкова О.А., Лоретц О.Г., Костюнина О.В., Зиновьева Н.А. Оценка геномной вариабельности продуктивных признаков у животных голштинизированной черно-пестрой породы на основе GWAS анализа и ROH паттернов // Сельскохозяйственная биология. 2020. Т. 55, № 2ю. Р. 257-274. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2020.2.257rus.
8. Snelling W.M., Allan M.F., Keele J.W., Kuehn L.A., McDaneld T., Smith T.P.L., Sonstegard T.S., Thallman R.M., Bennett G.L. Genome-wide association study of growth in crossbred beef cattle // Journal of Animal Science. 2010. Vol. 88, no. 3. P. 837-848. https://doi.org/10.2527/jas.2009-2257.
9. Northcutt S.L., Wilson D.E. Genetic parameter estimates and expected progeny differences for mature size in Angus cattle // Journal of Animal Science. 1993. Vol. 71, no. 5. P. 1148-1153. https://doi.org/10.2527/1993.7151148x.
10. Zinovieva N.A., Dotsev A.V., Sermyagin A.A., Deniskova T.E., Abdelmanova A.S., Kharzinova V.R., Sölkner J., Reyer H., Wimmers K., Brem G. Selection signatures in two oldest Russian native cattle breeds revealed using high-density single nucleotide polymorphism analysis // PLoS One. 2020. Vol. 15(11). Article number: e0242200. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0242200.
11. Taye M., Yoon J., Dessie T., Cho S., Oh S.J., Lee H.K., Kim H. Deciphering signature of selection affecting beef quality traits in Angus cattle // Genes & Genomics. 2018. Vol. 40, no. 1. P. 63-75. https://doi.org/10.1007/s13258-017-0610-z.
12. Lu D., Miller S., Sargolzaei M., Kelly M., Vander Voort G., Caldwell T., Wang Z., Plastow G., Moore S. Genome-wide association analyses for growth and feed efficiency traits in beef cattle // Journal of Animal Science. 2013. Vol. 91, no. 8. P. 3612-3633. https://doi.org/10.2527/jas.2012-5716.
13. Doyle J.L., Berry D.P., Veerkamp R.F., Carthy T.R., Walsh S.W., Evans R.D., Purfield D.C. Genomic regions associated with skeletal type traits in beef and dairy cattle are common to regions associated with carcass traits, feed intake and calving difficulty // Frontiers in Genetics. 2020. Vol. 11. Article number 20. https://doi.org/10.3389/fgene.2020.00020.
14. An B., Xu L., Xia J., Wang X., Miao J., Chang T., Song M., Ni J., Xu L., Zhang L., Li J., Gao H. Multiple association analysis of loci and candidate genes that regulate body size at three growth stages in Simmental beef cattle // BMC Genetics. 2020. Vol. 21. Article number: 32. https://doi.org/10.1186/s12863-020-0837-6.
15. McClure M.C., Morsci N.S., Schnabel R.D., Kim J.W., Yao P., Rolf M.M., McKay S.D., Gregg S.J., Chapple R.H., Northcutt S.L., Taylor J.F. A genome scan for quantitative trait loci influencing carcass, postnatal growth and reproductive traits in commercial Angus cattle // Animal Genetics. 2010. Vol. 41, no. 6. P. 597-607. https://doi.org/10.1111/j.1365-2052.2010.02063.x.
16. Karim L., Takeda H., Lin L., Druet T., Arias J.A., Baurain D., Cambisano N., Da-vis S.R., Farnir F., Grisart B., Harris B.L., Keehan M.D., Littlejohn M.D., Spelman R.J., Georges M., Coppieters W. Variants modulating the expression of a chromo-some domain encompassing PLAG1 influence bovine stature // Nature Genetics. 2011. Vol. 43. P. 405-413. https://doi.org/10.1038/ng.814.
17. Boitard S., Boussaha M., Capitan A., Rocha D., Servin B. Uncovering adaptation from sequence data: lessons from genome resequencing of four cattle breeds // Genetics. 2016. Vol. 203, iss. 1. P. 433-450. https://doi.org/10.1534/genetics.115.181594.
18. Fortes M.R.S., Kemper K., Sasazaki S., Reverter A., Pryce J.E., Barendse W., Bunch R., McCulloch R., Harrison B., Bolormaa S., Zhang Y.D., Hawken R.J., Goddard M.E., Lehnert S.A. Evidence for pleiotropism and recent selection in the PLAG1 region in Australian Beef cattle // Animal Genetics. 2013. Vol. 44. P. 636-647. https://doi.org/10.1111/age.12075.
19. Pausch H., Flisikowski K., Jung S., Emmerling R., Edel C., Götz K.U., Fries R. Genome-wide association study identifies two major loci affecting calving ease and growth-related traits in cattle // Genetics. 2011. Vol. 187, iss. 1. P. 289-297. https://doi.org/10.1534/genetics.110.124057.
20. Abdelmanova A.S., Kharzinova V.R., Volkova V.V., Mishina A.I., Dotsev A.V., Sermyagin A.A., Boronetskaya O.I., Petrikeeva L.V., Chinarov R.Y., Brem G., Zinovieva N.A. Genetic diversity of historical and modern populations of Russian cattle breeds revealed by microsatellite analysis // Genes. 2020. Vol. 11, no. 8. P. 940. https://doi.org/10.3390/genes11080940.
References
1. Goddard M., Hayes B. Mapping genes for complex traits in domestic animals and their use in breeding programmes. Nature Reviews Genetics. 2009;(10):381-391. https://doi.org/10.1038/nrg2575.
2. Pant S.D., Schenkel F.S., Verschoor C.P., You Q., Kelton D.F., Moore S.S., Karrow N.A. A principal component regression based genome wide analysis approach reveals the presence of a novel QTL on BTA7 for MAP resistance in Holstein cattle. Genomics. 2010;95(3):176-182. https://doi.org/10.1016/j.ygeno.2010.01.001.
3. Wu Y., Fan H., Wang Y., Zhang L., Gao X., Chen Y., Li J., Ren H., Gao H. Genome-wide association studies using haplotypes and individual SNPs in Simmental cattle. PLoS ONE. 2014;9(10):e109330. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0109330.
4. Nelsen T.C., Short R.E., Urick J.J., Reynolds W.L. Heritabilities and genetic correlations of growth and reproductive measurements in Hereford bulls. Journal of Animal Science. 1986;63(2):409-417. https://doi.org/10.2527/jas1986.632409x.
5. Abdelmanova A.S., Kharzinova V.R., Volkova V.V., Dotsev A.V., Sermyagin A.A., Chinarov R.Y., Zinovieva N.A., Boronetskaya O.I., Lutshikhina E.M., Sölkner J., Brem G. Comparative study of the genetic Diversity of local steppe cattle breeds from Russia, Kazakhstan and Kyrgyzstan by microsatellite analysis of museum and modern samples. Diversity. 2021;13(8):351. https://doi.org/10.3390/d13080351.
6. Zinovieva N.F., Sermyagin A.A., Dotsev A.V., Boronetskaya O.I., Petrikeeva L.V., Abdelmanova A.S., Brem G. Animal genetic resources: developing the research of allele pool of Russian cattle breeds – minireview. Sel'skohozyajstvennaya biologiya = Agricultural biology. 2019;54(4):631-641. (In Russ.). https://doi.org/10.15389/agrobiology.2019.4.631rus.
7. Sermyagin A.A., Bykova O.A., Loretts O.G., Kostyunina O.V., Zinovieva N.A. Genomic variability assess for breeding traits in Holsteinizated Russian black-and-white cattle using GWAS analysis and ROH patterns. Sel'skohozyajstvennaya biologiya = Agricultural biology. 2020;55(2):257-274. (In Russ.). https://doi.org/10.15389/agrobiology.2020.2.257rus.
8. Snelling W.M., Allan M.F., Keele J.W., Kuehn L.A., McDaneld T., Smith T.P.L., Sonstegard T.S., Thallman R.M., Bennett G.L. Genome-wide association study of growth in crossbred beef cattle. Journal of Animal Science. 2010;88(3):837-848. https://doi.org/10.2527/jas.2009-2257.
9. Northcutt S.L., Wilson D.E. Genetic parameter estimates and expected progeny differences for mature size in Angus cattle. Journal of Animal Science. 1993;71(5):1148-1153. https://doi.org/10.2527/1993.7151148x.
10. Zinovieva N.A., Dotsev A.V., Sermyagin A.A., Deniskova T.E., Abdelmanova A.S., Kharzinova V.R., Sölkner J., Reyer H., Wimmers K., Brem G. Selection signatures in two oldest Russian native cattle breeds revealed using high-density single nucleotide polymorphism analysis. PLoS ONE. 2020;15(11):e0242200. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0242200.
11. Taye M., Yoon J., Dessie T., Cho S., Oh S.J., Lee H.K., Kim H. Deciphering signature of selection affecting beef quality traits in Angus cattle. Genes & Genomics. 2018;40(1):63-75. https://doi.org/10.1007/s13258-017-0610-z.
12. Lu D., Miller S., Sargolzaei M., Kelly M., Vander Voort G., Caldwell T., Wang Z., Plastow G., Moore S. Genome-wide association analyses for growth and feed efficiency traits in beef cattle. Journal of Animal Science. 2013;91(8):3612-3633. https://doi.org/10.2527/jas.2012-5716.
13. Doyle J.L., Berry D.P., Veerkamp R.F., Carthy T.R., Walsh S.W., Evans R.D., Purfield D.C. Genomic regions associated with skeletal type traits in beef and dairy cattle are common to regions associated with carcass traits, feed intake and calving difficulty. Frontiers in Genetics. 2020;(11):20. https://doi.org/10.3389/fgene.2020.00020.
14. An B., Xu L., Xia J., Wang X., Miao J., Chang T., Song M., Ni J., Xu L., Zhang L., Li J., Gao H. Multiple association analysis of loci and candidate genes that regulate body size at three growth stages in Simmental beef cattle. BMC Genetics. 2020;(21):32. https://doi.org/10.1186/s12863-020-0837-6.
15. McClure M.C., Morsci N.S., Schnabel R.D., Kim J.W., Yao P., Rolf M.M., McKay S.D., Gregg S.J., Chapple R.H., Northcutt S.L., Taylor J.F. A genome scan for quantitative trait loci influencing carcass, post-natal growth and reproductive traits in commercial Angus cattle. Animal Genetics. 2010;41(6):597-607. https://doi.org/10.1111/j.1365-2052.2010.02063.x.
16. Karim L., Takeda H., Lin L., Druet T., Arias J.A., Baurain D., Cambisano N., Davis S.R., Farnir F., Grisart B., Harris B.L., Keehan M.D., Littlejohn M.D., Spelman R.J., Georges M., Coppieters W. Variants modulating the expression of a chromo-some domain encompassing PLAG1 influence bovine stature. Nature Genetics. 2011;(43):405-413. https://doi.org/10.1038/ng.814.
17. Boitard S., Boussaha M., Capitan A., Rocha D., Servin B. Uncovering adaptation from sequence data: lessons from genome resequencing of four cattle breeds. Genetics. 2016;203(1):433-450. https://doi.org/10.1534/genetics.115.181594.
18. Fortes M.R.S., Kemper K., Sasazaki S., Reverter A., Pryce J.E., Barendse W., Bunch R., McCulloch R., Harrison B., Bolormaa S., Zhang Y.D., Hawken R.J., Goddard M.E., Lehnert S.A. Evidence for pleiotropism and recent selection in the PLAG1 region in Australian Beef cattle. Animal Genetics. 2013;(44):636-647. https://doi.org/10.1111/age.12075.
19. Pausch H., Flisikowski K., Jung S., Emmerling R., Edel C., Götz K.U., Fries R. Genome-wide association study identifies two major loci affecting calving ease and growth-related traits in cattle. Genetics. 2011;187(1):289-297. https://doi.org/10.1534/genetics.110.124057.
20. Abdelmanova A.S., Kharzinova V.R., Volkova V.V., Mishina A.I., Dotsev A.V., Sermyagin A.A., Boronetskaya O.I., Petrikeeva L.V., Chinarov R.Y., Brem G., Zinovieva N.A. Genetic diversity of historical and modern populations of Russian cattle breeds revealed by microsatellite analysis. Genes. 2020;11(8):940. https://doi.org/10.3390/genes11080940.
Ключевые слова:
калмыцкий скот, полиморфизм, казахская белоголовая порода, симментальская порода, герефордская порода, эритроцитарные факторы крови, частота встречаемости антигенов
Key words:
Kalmyk cattle, polymorphism, Kazakh white-headed breed, Simmental breed, Hereford breed, erythrocyte blood factors, frequency of antigens
Для цитирования:
Чимидова Н.В., Моисейкина Л.Г., Болаев Б.К., Убушиева А.В. Генетическая структура крупного рогатого скота разных пород по антигенным факторам крови // Аграрно-пищевые инновации. 2022. Т. 18, № 2. С. 26-36. https://doi.org/10.31208/2618-7353-2022-18-26-36
For citation:
Chimidova N.N., Moiseikina L.G., Bolaev B.K., Ubushieva A.V. Genetic structure of cattle of different breeds by antigenic blood factors. Agrarian-and-food innovations. 2022;18(2):26-36. (In Russ.). https://doi.org/10.31208/2618-7353-2022-18-26-36 |
